Section.01
石蠟切片 VS 冰凍切片
有何區(qū)別?
組織樣本的免疫熒光主要有兩種制備方式:石蠟切片和冰凍切片。兩者各有優(yōu)劣,適用場(chǎng)景也大不相同。
石蠟切片免疫熒光 (Paraffin section) 雖在組織形態(tài)保存和長期儲(chǔ)存方面具有優(yōu)勢(shì),但其制備過程涉及高溫烘烤、二甲苯脫蠟等步驟[1][2],容易導(dǎo)致某些敏感蛋白 (如細(xì)胞表面受體、細(xì)胞因子、磷酸化蛋白等) 的抗原表位被破壞或掩蔽,使得抗體“認(rèn)不出"目標(biāo)蛋白,造成假陰性。此外,石蠟切片的制備周期較長,不適用于醫(yī)學(xué)病理檢測(cè)等場(chǎng)景。
相比之下,冰凍切片免疫熒光 (Frozen section immunofluorescence) 直接將新鮮或快速冷凍的組織置于低溫環(huán)境下進(jìn)行切片。這一過程極大地縮短了制片時(shí)間,同時(shí)保留了組織中的多種抗原免疫活性。免疫熒光技術(shù)則進(jìn)一步利用熒光標(biāo)記的抗體與組織中的特定抗原結(jié)合,通過熒光顯微鏡觀察,實(shí)現(xiàn)對(duì)抗原的精確定位和可視化[3]。

圖 1. 石蠟切片 (上) 和冰凍切片 (下) 流程[2][4]。
表 1. 石蠟切片、冰凍切片的區(qū)別[5]。

Section.02
為什么有些蛋白
“非冰凍不可"?
首先,當(dāng)檢測(cè)敏感蛋白/低表達(dá)抗原時(shí),石蠟切片的高溫、二甲苯脫蠟等步驟,會(huì)導(dǎo)致敏感蛋白抗原表位變性,讓抗體無法識(shí)別。冰凍切片低溫冷凍、不接觸高溫和有機(jī)溶劑,能保留抗原免疫活性,對(duì)細(xì)胞表面受體、磷酸化蛋白等敏感抗原的檢測(cè)靈敏度遠(yuǎn)高于石蠟切片。此外,珍貴、難重復(fù)取材的組織樣本也適合冰凍切片。
其次,在應(yīng)急診斷/手術(shù)中快速診斷時(shí),石蠟切片制備需 2-3 天,無法滿足應(yīng)急需求。冰凍切片 30 分鐘內(nèi)可完成包埋切片,1-2 小時(shí)完成染色,是手術(shù)切緣判斷、急性病變?cè)\斷的一選擇,能為臨床決策及時(shí)提供依據(jù)[1]。
此外,在進(jìn)行多抗原共定位分析時(shí)——石蠟切片:不同抗原修復(fù)條件不一,易出現(xiàn)修復(fù)不均問題;冰凍切片:無需抗原修復(fù),可同時(shí)孵育多種一抗,實(shí)現(xiàn)多通道熒光標(biāo)記,清晰呈現(xiàn)多種抗原的空間分布關(guān)系。
Section.03
冰凍切片免疫熒光
怎么做?

圖 2. OCT 包埋、冷凍切片以及顯微鏡下觀察示意圖[6]。
冰凍切片免疫熒光詳細(xì)步驟[4][5]:
組織前處理
『取材與固定』
快速取出新鮮組織 (如小鼠腦、肝、腎等),用 1xPBS 沖洗去除血跡,浸沒在 4% PFA,放在 4℃ 固定 12-24 小時(shí)。
『脫水』
隨后將固定后的組織轉(zhuǎn)移至 15% 蔗糖溶液 (4℃),待其都沉底 (約數(shù)小時(shí));轉(zhuǎn)入 30% 蔗糖溶液 (4℃) ,繼續(xù)孵育直至再次都沉底 (一般過夜),目的是為了脫去水分;
『包埋與冷凍』
取出沉底的組織,用濾紙輕輕吸干表面多余水分。放入包埋模具中,用足量的 OCT 包埋劑都覆蓋組織,確保沒有氣泡。接著迅速放在干冰或液氮?dú)庀鄬舆M(jìn)行速凍,直至形成白色硬塊,取出后可立即放入 -80℃ 冰箱保存,或直接用于切片。
注意:
(1) 固定時(shí)間不宜過長,防止過度交聯(lián)影響抗原暴露。
(2) 蔗糖溶液要用 PBS 配制,不推薦用水溶解。
(3) 若組織未都沉底即進(jìn)行冷凍,易因水分過多而產(chǎn)生冰晶空洞。
(4) 冷凍速度越快,形成的冰晶越小,組織結(jié)構(gòu)保存越好。
切片與免疫染色
『切片』
提前將 OCT 包埋塊放入冷凍切片機(jī)腔體 (溫度 -20℃ 左右),平衡 30 分鐘。
修整組織表面,設(shè)置切片厚度 (一般 5-10 μm)。轉(zhuǎn)動(dòng)切片機(jī)輪盤,輔以防卷板,連續(xù)平整切片并貼附在防脫載玻片上,置于室溫晾干 30-60 分鐘后儲(chǔ)存于 -80℃ 或者直接進(jìn)行下一步。
『封閉和穿孔』
將切片用 1xPBS 清洗 3 次,每次 5 min,目的是為了去除切片表面的 OTC,再甩去多余液體,在組織周圍用疏水筆畫圈,并向組織加入封閉液 (5% 正常山羊血清或 5% BSA+ 0.3% Triton X-100),室溫孵育 1 h。
『一抗孵育』
吸去封閉液,立即滴加合適比例的一抗,確保整個(gè)組織都覆蓋。將載玻片放回濕潤的盒子里,4℃ 冰箱過夜。接著取出后先放復(fù)溫至室溫,用 1xPBS 清洗 3 次,每次 5 min。
『二抗孵育』
再滴加熒光標(biāo)記的二抗,室溫避光孵育 1 h。用 1xPBS 清洗 3 次,每次 5 min。
『染核與封片』
盡量吸干玻片上殘余的水分,在樣品處滴加含有 DAPI 的抗熒光淬滅封片劑,蓋上蓋玻片進(jìn)行封片,盡量排除氣泡。室溫通風(fēng)晾干 2-4 小時(shí),或 4℃ 避光保存過夜。
『觀察和圖像處理 』
使用熒光顯微鏡或共聚焦顯微鏡觀察并拍照。圖片可用 ImageJ 軟件進(jìn)行分析處理。
注意:
(1) 操作過程中應(yīng)避免組織長時(shí)間處于干燥狀態(tài);
(2) 熒光染色過程需要避光。
Section.04
常見問題+
解決方案
Q1. 背景普遍較高,非特異性信號(hào)多
可能原因:封閉不充分;熒光二抗非特異性結(jié)合;組織樣品干燥時(shí)間長
解決方案:延長封閉時(shí)間;二抗種屬來源一致或使用;操作過程保持組織樣品濕潤。
Q2. 顯微鏡下視野中“黑洞"較多
可能原因:蔗糖脫水不全;冷凍速度太慢形成冰晶;封片時(shí)未排盡氣泡
解決方案:確保 30% 蔗糖都沉底;包埋時(shí)用液氮/干冰速凍;封片確保氣泡全部去除。
Q3. 組織容易脫落載玻片
可能原因:載玻片材料不合適;切片未在室溫下復(fù)溫就染色。
解決方案:選用Superfrost Plus 防脫載玻片;室溫下復(fù)溫 30 min 左右。
其實(shí)!石蠟切片和冰凍切片,從來不是“對(duì)立關(guān)系",而是“互補(bǔ)關(guān)系"——
(1) 如需做常規(guī)病理、長期存檔、不敏感抗原檢測(cè),選石蠟切片,省心又穩(wěn)定;
(2) 如需做敏感抗原、低表達(dá)抗原、術(shù)中快速診斷,選冰凍切片,精準(zhǔn)又高效。
冰凍切片免疫熒光的核心優(yōu)勢(shì)是“保留抗原活性",這是石蠟切片無論如何優(yōu)化都難以替代的。雖說冰凍切片步驟略多,但只要掌握正確方法,避開常見坑,就可獲得實(shí)驗(yàn)順利!
參考文獻(xiàn)
[1] Qin C, et al. The Cutting and Floating Method for Paraffin-embedded Tissue for Sectioning. J Vis Exp. 2018 Sep 5;(139):58288.
[2] Zaquot et al. (2020). Immunofluorescence Staining of Paraffin Sections Step by Step.
[3] Punchihewa et al. (2021). Immunostained Frozen Sections Vs Traditional Permanent Paraffin Sections for Lentigo Maligna.
[4] Davis et al. Preparation of Frozen Sections.
[5] Spencer L T. Microtomy for paraffin and frozen sections[J]. Bancroft’s Theory and Practice of Histological Techniques, 8th ed.; Suvarna, SK, Layton, C., Bancroft, JD, Eds, 2018: 84-95.
[6] Ma X, et al. Protocol for Xenium spatial transcriptomics studies using fixed frozen mouse brain sections. STAR Protoc. 2024 Dec 20;5(4):103420.

(空格分隔,最多3個(gè),單個(gè)標(biāo)簽最多10個(gè)字符)
立即詢價(jià)
您提交后,專屬客服將第一時(shí)間為您服務(wù)